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Correo Científico Médico de Holguín 2003;7(1)

 

Facultad de Ciencias Médicas  “Mariana Grajales”  Holguín

 

Optimización  de la purificación  de IgG humana por cromatografía de intercambio iónico.

 

Optimization of human IgG purification by  ion exchange  chromatography

 

Tamahara Fernández Iglesias 1,  Maritza Ulloa Román 2, Rolando Sánchez Artigas3, Elizabeth   Guilarte Barinaga 4

 

1 Máster en Didáctica de la Química. Asistente. Instituto Superior Pedagógico "José de la Luz y Caballero".

2 Máster en Biotecnología. Profesora Auxiliar. Instituto Superior Pedagógico "José de la Luz y Caballero".

3 Especialista de 2do grado en Inmunología. Facultad de Ciencias Médicas "Mariana Grajales".

4 Lic. en Química. Facultad de Ciencias Médicas "Mariana Grajales".

 

 

RESUMEN

 

La purificación de inmunoglobulinas humanas constituye el paso inicial para obtención de antisueros de gran utilidad en el diagnóstico de diferentes patologías. En el presente trabajo se desarrolló un experimento con diseño factorial 2En para la opti­mización de un procedimiento para la purificación de IgG a partir de suero humano normal. El mismo combina la precipitación con sulfato de amonio al 50% de saturación y la cromatografía de intercambio iónico en una columna de 40 g de DEAE-Celulosa. Se realizaron cuatro experimentos con el objetivo de optimizar la velocidad de flujo y el volumen de suero. Como resultado quedaron seleccionadas como las mejores condiciones de nuestro experimento para la purificación de IgG por su recobrado y pureza la veloci­dad de 19,1 cm/h y 8 ml de volumen de suero.

Descriptores: Inmunoglobulinas humanas. IgG, Aislamiento y Purificación, Cromatografía.

            

ABSTRACTS

 

Purification of human immunoglobulins like IgG is the first step in antiserum production for clinical use. In this paper, a factorial experiment was developed for the optimization of  IgG purification from normal human serum . The procedure used was carried out by means of ammonium sulfate precipitation and ion exchange chromatography using 40 g of  DEAE-Cellulose. Flow rate and serum volume were analyzed through out four experiments. Application and elution steps was  developed with 0.01 mol/L  pH=8  phosphate  buffer. Flow rate of 19.1 cm/h and serum 8 ml were selected as the best conditions for the human IgG purification in these experiments.

Key words: IgG, purification, ion exchange chromatography, optimization.

 

INTRODUCCIÓN

 

Uno de los principales retos a las Ciencias Médicas modernas es la incorporación de los métodos inmunológicos e inmunoquímicos en el diagnóstico y la terapéutica clínica. El desarrollo alcanzado en estos últimos años ha permitido detectar modificaciones en los valores de las inmunoglobulinas en numerosas patologías (1). Estas técnicas requieren por lo general de la utilización de sueros hiperinmunes de antiinmunoglobulinas humanas para cuya obtención se necesita contar con las diferentes inmunoglobulinas en estado puro. Entre los métodos cromatográficos más empleados para la purificación de inmunoglobulinas se encuentra la cromato­grafía de intercambio iónico (2,3,4), la de afinidad (5,6) y la de adsorción (7,8). Por lo general se logran mejores resultados cuando se combinan diferentes métodos(9,10,11).

El presente trabajo aborda el montaje y optimización de un procedimiento para la purificación de inmunoglobulina G a partir de suero humano normal.

 

MATERIALES Y MÉTODOS

 

Para la realización del presente trabajo se utilizó un pool de suero humano proveniente del Banco Provincial de Sangre de Hol­guín, debidamente certificado. Se utilizó un esquema de purifica­ción que combina la precipitación con sulfato de amonio al 50% de saturación, posterior desalinización del precipitado mediante diálisis y cromatografía de intercambio iónico en una columna que contenía 40 g  de DEAE-Celulosa DE-52 (Whatman) utilizando buffer fosfato 0,01 mol/L pH=8 para la aplicación y  la elución. A las fracciones eluidas se les midió la absorbancia a 280 nm para obtener los cromatogramas.

Para la optimización del procedimiento se realizó un experimento con un diseño factorial 2n con el  objetivo   de  optimizar  la  velocidad  de    flujo  y  el   volumen  de   suero. Se   realizaron    cuatro experimentos para los que se seleccionaron los valores máximos y mínimos de cada variable y cuyo orden de realización se determinó aleatoriamente (12). La tabla 1 muestra los datos para la reali­zación de los experimentos. Se llevó a cabo la cuantificación de proteínas por el método de Lowry (13) y como criterio de pureza se utilizó la inmunoelectroforesis. (2)

 

 

RESULTADOS

 

La figura 1 muestra el cromatograma típico obtenido para los diferentes  experimentos. Las principales diferencias radicaron en la altura de los picos cuya elución se realizó con el buffer fosfato 0,01 mol/l. En aquellas corridas que se efectuaron a alta velocidad se obtienen valores  más altos de absorbancia para este pico  con relación a las que se efectuaron a velocidad más baja.

Al  realizar la doble inmunodifusión a las fracciones proteicas colectadas con ese buffer  se comprobó que los mismos contenían IgG. De igual forma se detectó que en el pico que eluye con buffer fosfato 0,03 mol/l hay presentes IgG e IgA.

Se realizó la inmunoelectroforesis para comprobar el grado de pureza de la IgG del pico 1, detectándose que  sólo en las corridas 3 y 4, que se hicieron a baja velocidad, se obtuvo la IgG pura.

En la tabla 2 se reportan comparativamente los resultados de los experimentos realizados. Como se puede apreciar los máximos recobrados se alcanzan cuando los volúmenes de muestra son de 8 ml (corridas 2 y 3). Por otra parte la máxima pureza del pico IgG se logra en aquellas corridas que se efectúan a baja velocidad de flujo  (corridas 3 y 4).

 

DISCUSIÓN

 

Al analizar los resultados del cromatograma obtenido, se puede observar que este resultado coincide con lo descrito anteriormente por Margni (2) quien plantea que la  IgG  de suero humano normal, eluye con buffer fosfato 0,01 mol/l.

El estudio realizado de las diferentes velocidades de corrida nos muestra que los mejores resultados se alcanzan en las que se realizan a baja velocidad, lo que evidencia que al aumentar la misma, se produce una pobre interacción con el gel de las sustancias a separar y ocasiona la elución con el buffer inicial de otras proteínas no deseadas. En el experimento 3   coinciden  los mejores resultados de recobrado y pureza.

De acuerdo con los resultados de los experimentos realizados se puede seleccionar como mejor corrida para una columna que contie­ne 40 g de DEAE- celulosa DE- 52, la que se efectúa a baja veloci­dad de flujo (19,1 cm/h) y volumen mínimo de muestra (8 ml), ya que en la misma se obtienen los mejores resultados de pureza y recobrado. Por lo anterior se sugiere que se utilicen estas condiciones de corrida en el procedimiento habitual de purifica­ción  de IgG  por cromatografía de intercambio iónico a partir de suero humano normal.

 

BIBLIOGRÁFICAS 

  1. Stite D. Inmunología Básica y Clínica.  La Habana: Ed  Pueblo y Educación 1987.
  2. Margni,R.A Inmunología e Inmunoquímica.  La Habana: Ed Pueblo y  Educación, 1982.
  3. Tanaka K, Sawatani E, Días GA, Shigueoka EM, Campos TC, Nakao HC, Arashiro F. High quality human immunoglobulin G purified from Cohn fractions by liquid chromatography. Braz J Med Biol Res 2000 ; 33(1): 27-30
  4. Corthier G, Boschetti E, Charley-Paulain J. Improved method for IgG purification from various animal species by ion exchange chromatography. J Immun Meth 1984; (66): 175-179.
  5. Specific monoclonal antibody purification techniques. The use of protein A sepharose to purify murine IgG. Separation News. Pharmacia. Uppsala Sweden 1987;  13 (5): 6.
  6. Protein G and Protein G-Sepharosa Fast Flow. Pharmacia- LKB. Data sheet. Uppsala Sweden 1988: 1-6.
  7. 7.Henniker A, Bradstoch K. Purification of two murine monoclonal antibodies of IgM  class by hidroxiapatite chromatography and gel filtration. Biom Chrom 1990; 7; 121-125.
  8. Yu YC, Huang YC, Lee TY. Purification of antibodies from protein mixtures and mouse ascites fluid using Zeolite X. Biotechnol Prog  1998;14(2): 332-7
  9. Jiskoot W, Van Hertroij J, Hoven A M. Preparation of clinical grade monoclonal  antibody serum containing cells culture supernatants. J Immun Meth 1991; 138: 273-283.
  10. Qi Y, Yan Z, Huang J. Chromatography on DEAE ion-exchange and Protein G affinity columns in tandem for the separation and purification of proteins. J Biochem Biophys Methods  2001;  49(1-3): 263-73
  11. Boschetti E. Antibody separation by hydrophobic charge induction chromatography. Trends Biotechnol  2002; 20(8): 333-7
  12. López, R. Diseño estadístico de experimentos. La Habana: Editorial Científico Técnica. 1988.
  13. Lowry DM, Rosembrough NJ, Farr AL, Randal RJ. Protein  measurement with the Folin Phenol reagent. J Biol Chem 195; 265-269.

Tabla 1. Valores de las variables y orden de realización de los experimen­tos de purificación de IgG humana
por Cromatografía de Intercam­bio Iónico.

  

                    Orden de ejecución             Volumen              Velocidad

                                                                     (ml)                   (cm/h)         

                               1                                     12                       47,7

                               2                                       8                       47,7

                               3                                       8                       19,1

                               4                                     12                       19,1

 

 

 Tabla 2.  Comparación de los resultados de las corridas del experimento realizado   para  la   cromatografía
de  intercambio  iónico en DEAE-Celulosa.

 

Número del              Concentración          Recobrado               Pureza

experimento             de   proteína              de IgG

                               ( mgIgG/ml )          ( mg/ml suero)

   1                                 5,97                       17,91                          no

   2                                 4,55                       23,43                          no

   3                                 4,15                       19,71                         

   4                                 5,76                       14,62                         

 

Figura 1. Perfil  de elución obtenido para la purificación de IgG a partir de suero humano

               normal.

 

Correspondencia: Rolando Sánchez Artigas. Facultad de Ciencias Médicas de Holguín. E_mail: rolando@cristal.hlg.sld.cu

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