Hospital Provincial Docente V. I. Lenin. Holguín. Unidad de Cuidados Intensivos.
Acinetobacter en unidades de atención a pacientes graves. UCI. Hospital V.I. Lenin. Holguín. 2000.
Acinetobacter in intensive care units.2000.
José A Bedia González1, Idaer M. Batista Ojeda1, Jorge Terrero de la Cruz1, Ernesto Medrano Montero1, Osvaldo Alvarez Martìnez2.
1 Especialista de 1er. Grado
en Medicina Interna Intensivista
2 Especialista de 1er. Grado en Anestesiología y Reanimación
Intensivista
RESUMEN
Se realizó una revisión actualizada del tema sobre el comportamiento de la infección nosocomial por Acinetobacter con la finalidad de conocer las características de su comportamiento en estas unidades, por estar muy relacionado a una elevada mortalidad.
Se revisan elementos como el comportamiento histórico en la UCI, las características clínico-epidemiológicas de las infecciones por estos organismos, la resistencia y las medidas de vigilancia y control en estas unidades.
Descriptores: Acinetobacter, infección nosocomial, unidad de cuidados intensivos.
ABSTRACT
An up-to-date review on infections due to Acinetobacter species is is conducted in order to know its characteristics in Intensive Care Units, because of its high mortality.
The historical behaivor in ICUs, clinical epidemiological characteristics of infections due to these species, resistance, survival and control measures are reviewed.
Key-words: Acinetobacter, nosocomial infection, intensive care unit.
INTRODUCCIÓN
Acinetobacter, un cocobacilo gramnegativo aerobio no fermentador, ha sido identificado como agente colonizante e infectante de pacientes en unidades de cuidados intensivos, hemodiálisis, servicios de neurocirugía y unidades caumatológicas.1,2
El género Acinetobacter consta de 12 especies, entre las que destacan A. baumannii (antes Acinetobacter calcoaceticus anitratus), A. Haemolyticus y A. Johnsonii.
En 1998, fue el género más aislado en la Unidad de Cuidados Intensivos del Hospital ¨V. I. Lenin¨ de Holguín (16 aislados, 25% del total de microorganismos). Durante 1999 y 2000, se aisló ocasionalmente, constituyendo el 6% y el 11.5%, respectivamente del total de gérmenes aislados en la unidad. Sin embargo, desde enero de 2001 se han reportado seis aislados en catéteres intravenosos.
Desde junio del pasado año nuestra unidad asienta provisionalmente en un cubículo destinado a cuidados intermedios de Cardiología, que consta de ocho camas para ingreso, local que resulta pequeño y, por consiguiente, es causa de hacinamiento. Desde entonces, se hacen reparaciones en la Unidad de Cuidados Intensivos, sin que se haya logrado finalizar en el periodo de 6 meses inicialmente fijado para la realización de las mismas.
RESISTENCIA
Acinetobacter baumanniies un patógeno actualmente resistente a todos los antimicrobianos comúnmente utilizados. Incluso se ha reportado resistencia a imipenem, un betalactámico del grupo de las carbapenemas, que tiene el mayor espectro antimicrobiano conocido. El mecanismo de resistencia obedece a la producción de betalactamasas, a la alteración de las proteínas ligadoras de penicilina o a la combinación de este último mecanismo con una reducción de la permeabilidad de la membrana externa.
Buisson y colaboradores2 reportaron un brote de Acinetobacter resistente a amikacina y sensible a tobramicina en la que se encontró correlación significativa entre el consumo de amikacina y la incidencia de casos.
Un estudio publicado por Pearce y colaboradores3 da cuenta de 12 Acinetobacter calcoaceticus aislados en pacientes con meningitis, todas resistentes a cotrimoxazol y tetraciclina, 50% resistentes a gentamicina y todas sensibles a cloranfenicol.
Urban y Rahal4 reportan dos poblaciones de Acinetobacter baumannii, en la década del 80, con diferentes antibiogramas en un hospital universitario de 487 camas. Los aislados multirresistentes eran sensibles a ceftazidima, amikacina e imipenem y los sensibles lo eran también a tobramicina, cotrimoxazol, gentamicina y ticarcilina/clavulanato. La posterior necesidad de una amplia utilización de imipenem, en 1990, provocó la aparición, al año siguiente, de cepas de Acinetobacter resistente a este poderoso antimicrobiano. Sólo la polimixina y el sulbactam, un inhibidor de betalactamasa utilizado en combinación con la ampicilina y la amoxicilina, demostraron ser activos contra estas cepas, resistentes además a aminoglucósidos (amikacina, tobramicina y gentamicina), ceftazidima, ciprofloxacina, cotrimoxazol, tetraciclina y ticarcilina/clavulanato. No obstante, se aislaron también cepas sólo sensibles a imipenem; sensibles a imipenem y amikacina, y un tercer grupo sensible a varios antimicrobianos.
Se han reportado también cepas resistentes a imipenem y sulbactam1 .
Catorce Acinetobacter spp. aislados en un estudio realizado en Bulgaria6 mostraron una elevada resistencia a aminoglucósidos, ceftazidima y ciprofloxacina; poco más del 20% fue resistente a imipenem; el 20% a tobramicina y cerca del 30% a ampìcilina/sulbactam.
Estudios realizados en la American University of Beirut Medical Center durante la pasado década reportan cepas de Acinetobacter spp. sólo sensibles a imipenem y una progresiva resistencia a amikacina, ceftazidima y norfloxacina7.
La asociación de gentamicina, tobramicina, netilmicina o amikacina con imipenem o ciprofloxacina contra Acinetobacter baumannii con alta resistencia a aminoglucósidos y sensibles o moderadamente sensibles a la ciprofloxacina aumentó la eliminación in vitro8.
El cuadro 1 recoge la resistencia a Acinetobacter spp. en nuestro centro a partir del año 1991. Se constata una resistencia menor del 30% a colistimetato, azlocilina, ciprofloxacina (no se comprobó la sensibilidad en el año 2000) e imipenem. Colistimetato no se utiliza en nuestro centro desde hace años; el uso creciente ha aumentado la resistencia a más del 30% en los últimos años. La sensibilidad a azlocilina y ciprofloxacina comenzó a determinarse en 1999 y al imipenem en 2000.
MEDIDAS DE VIGILANCIA Y CONTROL
Las medidas de vigilancia y están dirigidas a determinar reservorios inanimados y en el personal. Se deben tomar muestras con hisopos estériles de las barandas de las camas, mesas, lavabos, llaves de agua, respiraderos, monitores, ventiladores, tiradores de puertas, registros de historia clínica, laringoscopios, cuchillas y mangos, y soportes de venoclisis e introducir en 5 ml de caldo de infusión de cerebro estéril. Se realizan, además, cultivos de las manos, al azar, al personal hospitalario, y se le instruye a lavarse las manos en una gran bolsa plástica con 100 ml de caldo de soya. Estas muestras se incuban a 37 grados C por 24 horas y cultivan en agar MacConkey.
Las medidas de control de la infección incluyen el monitoreo y el lavado de las manos, el cambio de guantes y el uso de la polimixina B para la irrigación de las heridas (cuando el brote se origina en una unidad de cuidados intensivos quirúrgica). La unidad se pinta y los objetos inanimados se limpian con una solución desinfectante.
Otra medida de control que ha demostrado su efectividad es la reducción del tratamiento con antimicrobianos5.
Cuadro 1: Resistencia a Acinetobacter spp.
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Menos del 30% 31-60% Más del 60%
1991:
Colistimetato Tetraciclina
Amikacina Cloranfenicol
Gentamicina
Carbenicilina
1995:
Colistimetato Gentamicina Cloranfenicol
Amikacina Tetraciclina Carbenicilina
1999:
Azlocilina Amikacina* Cefotaxima
Ciprofloxacina Ceftriaxona
Colistimetato Ceftazidima
Tetraciclina
Gentamicina
Cloranfenicol
Cotrimoxazol
2000:
Azlocilina Tetraciclina Gentamicina
Colistimetato Cloranfenicol Cotrimoxazol
Imipenem Carbenicilina
Amikacina
Cefotaxima
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Las especies de A. Baumannii, A. Iwofii y A. Haemalyticus tuvieron porcentajes de resistencia menores del 30%.
BIBLIOGRAFÍA
Correspondencia: José A Bedia González, UCI. Hospital V. I. Lenin.Ave Lenin # 2. Holguín 80100. E_mail: bedia@cristal.hlg.sld.cu